HE染色常見問題：Q3：細胞核染色過淺，顏色暗淡答：切片在蘇木素染液中停留過短，或蘇木素過度氧化失效，或分化時間太長。對策：重新染色。將組織切片放入0.01%氫氧化鈉、0.5%氨水、飽和的碳酸氫鈉溶液、乙醇溶液，每個3-5min即可，接著重新染色?？梢赃m當地組織的嗜堿性以增強核染色，如Zenker液固定的切片可放入5%碳酸氫鈉溶液中3h，自來水沖洗5-10min染色，或Bouin液固定的切片可放入5%碳酸氫鈉溶液中1h，自來水沖洗10min染色。Q4：細胞核染色過深，胞漿著藍色答：切片在蘇木素染液中停留過長；或切片太厚；或分化時間太短。這種情況首先鏡下看看切片厚度(比較好厚度1-2層細胞核)，要么重新染色，要么重新制片。南京英瀚斯，專業(yè)的病理染色實驗服務平臺。常用HE染色試劑配制方法。海南靠譜的HE染色外包

HE染色不管怎么操作，始終無法染色或淡染答：這種情況一般因為組織固定時采用了酸性甲醛;或者組織在甲醛中浸泡時間太長;或者久置的甲醛變性分解為甲酸。補救：防患于未然，要么使用新鮮的中性甲醛固定，要么在存放的甲醛中加一點碳酸鈉中和甲酸。對于已經固定的組織可考慮再次固定；對于已經制出的片子，染色前采用5%重鉻酸鉀溶液浸泡半小時以上，然后自來水漂洗5min，可改善染色。也可以將切片放入3%硫酸鐵銨溶液中，補充染色媒介，增強蘇木素與組織的親和力(蘇木素染色必須要媒介才能染上，單純的蘇木素與組織的親和力很弱)。內蒙古推薦的HE染色報告HE染色試驗技術及注意事項。

HE染色知識點1：對送檢組織標本的要求送檢組織標本在手術切除或活檢后應當立即放入4%中性緩沖甲醛溶液中固定。尸檢標本應當盡量在死亡后盡早取材固定。送檢組織需要全部取材的，應當在送檢單上注明，有特殊要求（如細菌培養(yǎng)、解釋道化學分析等）應當事先聯系，并且在標本未固定前進行處理。知識點2：組織取材要求在對送檢組織標本進行詳細檢查的基礎上，根據診斷的需要，確定取材的部位和塊數。切取的組織應當按照不同的部位分別給予不同的編號或標記，以便鏡檢時核對。另外，盡可能在取材前對有意義的標本的表面及剖面鏡下攝影，并編號存檔南京英瀚斯，專業(yè)的病理染色實驗服務平臺。

HE染色伊紅著色淡分析及應對原因：（1）伊紅染液的pH值可能大于5；（2）藍化液殘留過多；（3）切片太??；（4）切片經伊紅染色后在乙醇脫水時間過長。對策：檢查伊紅染液的pH值，如果必要的話，用乙酸將其調節(jié)在4～5之間，從而使伊紅染色彩艷麗。確保每次藍化步驟完成后，使用的弱堿性溶液被充分洗去，玻片上沒有殘留的弱堿性溶液。檢查切片的厚度。脫水時不要讓切片在低濃度乙醇停留時間過長，因為含水多的低濃度乙醇會將伊紅的顏色分化掉。HE染色規(guī)范化流程及注意事項？

HE染色常見問題：切片染色不均勻，有片狀的弱著**存在答：（1）取材時組織太厚，固定過久，導致深部組織固定不佳，而表淺組織過度固定，而透明、脫水、浸蠟均是如此，這樣在后期染色時就會出現染色不均勻。應該將厚的組織剖開固定。（2）制片過程有問題，切片厚薄不一，或者有刀痕，或組織與玻片間存在氣泡。同一張切片厚薄不一，一般都是在制片時，刀片固定不佳或刀片鈍或刀片與組織角度不佳（一般比較好角度為5°）（3）脫蠟前未烘烤，脫蠟時間過短或脫蠟液使用過久，導致脫蠟不徹底。（4）染色液過少，著色不均勻；或染色時部分組織干涸而另一部分濕潤，這樣會導致組織吸附染料的能力不一。（5）分化不當。南京英瀚斯，專業(yè)的病理染色實驗服務平臺。HE染色原理 試劑 染色步驟 注意事項 。海南靠譜的HE染色外包

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HE染色常見問題：成片的染色模糊不清，灰染答：（1）組織未及時固定，部分自溶；或固定不佳，深部組織未處理到。這種只能重新固定了。（2）盡管乙醇也是一種固定液，但盡量少用或不用，因為其會導致組織發(fā)硬變脆，染色效果不好。（3）包埋時蠟的溫度過高，或切片后烤片時間和溫度過久過高都不好，可能會導致無法染色。（4）脫蠟不徹底；染料有問題；分化過度導致的顏色變淡，鏡下組織界限不清；染完后的脫水和透明不佳，水霧殘留在組織上。（5）通風窗中（防止空氣中的水霧），戴口罩操作封片（減少哈氣帶來的水霧）。海南靠譜的HE染色外包