RCL/RCR病毒檢測的方法FDA推薦的RCL檢測方法是利用敏感細(xì)胞對病毒載體中可能存在的RCL進(jìn)行培養(yǎng)擴(kuò)增，并在培養(yǎng)終點(diǎn)進(jìn)行檢測。?擴(kuò)增期：將待測物與對HIV-1易感并且可大量擴(kuò)增病毒的細(xì)胞系(通常用C8166)孵育，細(xì)胞傳代5次以上，培養(yǎng)至少3周。?指示期：3周后收集培養(yǎng)上清，接種于C8166細(xì)胞中培養(yǎng)7d后檢測RCL標(biāo)志物。?檢測：A：P24ELLISA的方法：適用于由載體制備過程中病毒基因組之間的重組形成RCL的檢測。B：PERT法：當(dāng)RCL進(jìn)行擴(kuò)增后，也可應(yīng)用PERT檢測方法測定逆轉(zhuǎn)錄酶活性。該方法的缺點(diǎn)是在某些細(xì)胞中存在高背景。C：qPCR方法：采用實(shí)時(shí)定量PCR方法(Q-PCR)測定假型病毒重組腺相關(guān)病毒檢測。廣州復(fù)制型慢病毒檢測常見問題

用qPCR法進(jìn)行rcAAV復(fù)制型腺相關(guān)病毒檢測時(shí)，出現(xiàn)擴(kuò)增曲線復(fù)孔間熒光信號值降低及復(fù)孔間擴(kuò)增曲線重復(fù)性差的原因可能是什么？復(fù)孔間部分曲線熒光信號值降低的現(xiàn)象比較常見，通常與反應(yīng)管內(nèi)存在氣泡相關(guān)，隨反應(yīng)溫度升高，氣泡破裂導(dǎo)致熒光信號值降低。上機(jī)前需仔細(xì)檢查反應(yīng)管內(nèi)是否有氣泡殘留。另外，針對加樣誤差引起的復(fù)孔間重復(fù)性差，實(shí)驗(yàn)人員上崗前需加強(qiáng)培訓(xùn)并考核，移液器務(wù)必定期校準(zhǔn)并正確掌握使用方法。此外，還需注意確保試劑與樣品混勻，離心后再上機(jī)。合肥PCR法病毒檢測試劑盒復(fù)制型病毒檢測試劑盒。

盡管逆轉(zhuǎn)錄病毒和慢病毒載體被設(shè)計(jì)為具有復(fù)制缺陷，但仍有可能在生產(chǎn)過程中或輸注到患者體內(nèi)后發(fā)生重組，從而產(chǎn)生新的具有復(fù)制能力的逆轉(zhuǎn)錄病毒/慢病毒（RCR/RCL）。FDA在有關(guān)細(xì)胞產(chǎn)品和患者中檢測RCR復(fù)制型逆轉(zhuǎn)錄病毒/RCL復(fù)制型慢病毒的指南中建議使用適當(dāng)?shù)?span style="color:#f5c81c;">生物學(xué)和/或分子檢測方法進(jìn)行病毒載體、細(xì)胞產(chǎn)品和輸注后患者中的RCR復(fù)制型逆轉(zhuǎn)錄病毒/RCL復(fù)制型慢病毒檢測。南京正揚(yáng)生物自主研發(fā)了可用于基于細(xì)胞培養(yǎng)方法的qPCR檢測以及CAR-T終產(chǎn)品qPCR檢測的RCL及RCR檢測專   用試劑盒，幫助研究者進(jìn)行分析。

復(fù)制性慢病毒/復(fù)制性逆轉(zhuǎn)錄病毒檢測的背景：慢病毒載體來源于病原體HIV-1，為了保證產(chǎn)品的安全性，目前基因醫(yī)治產(chǎn)品所用的慢病毒載體/逆轉(zhuǎn)錄病毒載體均為非復(fù)制性。通過將基因組中的輔助蛋白刪除，并將結(jié)構(gòu)基因分別通過3-4個(gè)質(zhì)粒系統(tǒng)進(jìn)行分別包裝，形成三質(zhì)粒系統(tǒng)或者四質(zhì)粒系統(tǒng)，如圖1所示，極大的降低了產(chǎn)生具有復(fù)制能力慢病毒的可能性，這意味著至少需要2-3次完整的重組時(shí)間才能產(chǎn)生一個(gè)具有復(fù)制能力的慢病毒，在此基礎(chǔ)上進(jìn)一步修飾改造，構(gòu)建自失活的慢病毒載體（SIN），極大的提供包裝病毒的安全性，此外使用VSV-G蛋白取代env蛋白增加載體的穩(wěn)定性及受體細(xì)胞范圍。RCL/RCR產(chǎn)生的主要原因是轉(zhuǎn)移載體和包裝載體同源序列的重組。隨著新的載體系統(tǒng)的發(fā)展與應(yīng)用，載體系統(tǒng)中各元件之間發(fā)生同源重組的變化導(dǎo)致RCL/RCR生成機(jī)制和結(jié)構(gòu)的變化愈加復(fù)雜。而且，重組不僅限于載體系統(tǒng)之間各組分發(fā)生的重組，也包括載體成分和細(xì)胞基因組之間的重組。qPCR法復(fù)制型慢病毒檢測的工作流程。

基于細(xì)胞培養(yǎng)法的rcAAV復(fù)制型腺相關(guān)病毒檢測方法，該方法的原理是通過不斷的細(xì)胞傳代使得rcAAV實(shí)現(xiàn)擴(kuò)增，之后再利用qPCR或Southern-blot的方法對rcAAV進(jìn)行檢測，能保證檢測到的rcAAV都具有復(fù)制能力，是目前常用的檢測方法。然而，其檢測敏感性依賴于rcAAV對靶細(xì)胞的感   染效率，相較于AAV2型來說許多其他AAV血清型（1、3、5、6、7）在培養(yǎng)過程中不能有效地感   染靶細(xì)胞（例如HEK293/293T細(xì)胞），導(dǎo)致檢測靈敏度降低，因此其檢測值有可能會低于實(shí)際值。南京正揚(yáng)有復(fù)制型病毒檢測試劑盒試劑盒嗎？廣州復(fù)制型逆轉(zhuǎn)錄病毒檢測試劑盒

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根據(jù)現(xiàn)有法規(guī)和指導(dǎo)原則可以發(fā)現(xiàn)，RCL病毒檢測方法主要包含指示細(xì)胞培養(yǎng)法、ELISA法、PCR/q-PCR法和PERT法。因?yàn)橹甘炯?xì)胞培養(yǎng)法檢測需28天，并且因?yàn)殛栃詫φ詹《镜男再|(zhì)，要求其需要在P3或者P2實(shí)驗(yàn)室環(huán)境中進(jìn)行，致使該方法具有耗時(shí)長，環(huán)境要求高的特點(diǎn)。相比而言,基于VSV-G序列的q-PCR方法或基于psi-gag序列的PCR方法，因其具有檢測時(shí)間短、環(huán)境條件簡單、靈敏度高和可重復(fù)性強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn)，被許多CAR-T申報(bào)企業(yè)作為快速放行方法。歡迎聯(lián)系廣州復(fù)制型慢病毒檢測常見問題